
Tunel细胞凋亡检测试剂盒(FITC)
TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(FITC)
(TUNEL Apoptosis Assay Kit-FITC)
检测原理
细胞在发生凋亡时,会在生理生化和细胞形态上发生一系列变化,在凋亡中晚期,激活的
产品优势和特点
Toscience-TUNEL细胞凋亡检测试剂盒,集成了不同厂家产品的诸多特长,形成独特优势和特点:
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采用的重组TdT突变体酶活性更高,该转移酶的比活是其他试剂盒里TdT活力的10倍,同样情况下,不被标记的3’-OH 末端可以顺利标记上荧光,因此检测灵敏度更高;
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试剂盒对标记反应的底物进行了反复优化,采用最佳比例的FITC-dUTP和未标记的dNTP进行3’-OH末端的核苷酸掺入,使得同一个断裂的
·
非凋亡细胞由于缺乏大量的3’-OH 末端,不会被显著掺入和标记荧光素基团;
·
试剂盒提供的PI 核染料,可以将全部标记和未标记细胞的
·
产品使用方便,只需一步染色反应,染色完成后洗涤即可观察,约1-2个小时即可完成;
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应用范围广,既可以用于检测冷冻或石蜡切片中的细胞凋亡情况,也可以检测培养的贴壁细胞或悬浮细胞的凋亡情况。
检测方法:荧光显微镜或流式细胞仪
样本类型:石蜡包埋组织切片、组织冰冻切片、细胞涂片以及细胞悬液
储存条件:试剂盒需储存在-20℃非无霜冰箱中,避免反复冻融;
注意事项
·
为了避免试剂损失,使用前可以低速短暂离心融化后的试剂,然后小心开管取用;
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试剂盒使用后尽快放回-20℃冰箱保存;
·
TdT 酶在-20℃保存时不会凝固,不需要提前取出融化,只需在使用前迅速从-20℃冰箱中拿出取用后立即放回-20℃保存。
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FITC-12-dUTP标记混合液对光敏感,避光储存于–20℃,在标记时,孵育缓冲液或者包含标记混合物的载玻片要避免光照;
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标记反应混合液包含二甲胂酸钾(potassium cacodylate),避免接触皮肤和眼睛,操作时戴好手套;
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如果用于石蜡切片的检测,需自备蛋白酶K,二甲苯;
·
在标记反应中,推荐使用盖片或封口膜覆盖样本,保证反应液均匀分布,并避免孵育过程中缓冲液蒸发损失。准备覆盖膜时,可剪下一片Parafilm®封口膜,使其稍大于样本,并将一角折起便于在接下来实验步骤中取放;
·
用塑料或玻璃容器及纸巾自制湿盒,在样本处理过程中使用湿盒保持样本环境的湿润,一定避免样本干燥;
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固定样品,需自备多聚甲醛;
·
悬浮细胞可用以下方法固定或贴附在玻片上:
试剂盒组分
(1)
FITC-标记反应混合物(FITC-LABELING REACTION MIX):FITC-dUTP和未标记的dNTP以最佳的比例混合,在末端脱氧核糖核苷酸转移酶(TdT 酶)的作用下标记
(2)
TdT 酶(TdT ENZYME):将标记和未标记的脱氧核糖核苷酸掺入断裂的
(3)
PI染色液:含PI核染料,通过染色所有细胞的细胞核
操作流程
一、石蜡包埋组织切片处理流程
A. 样本的脱蜡处理
1、室温下将石蜡组织切片放入二甲苯中浸泡5 分钟。更换新的二甲苯再浸泡5 分钟以彻底脱掉石
蜡。
2、室温下用100%乙醇浸泡切片5 分钟,更换新的100%乙醇再浸泡5 分钟。
3、室温下用梯度乙醇(90、80、70%)各浸洗1 次,每次2分钟,逐渐增加水分。
4、用PBS 轻轻润洗切片,并用滤纸小心吸干玻片上样本周围多余的液体。这时可用石蜡笔或疏
水笔在样品周围描绘样品分布的轮廓,便于下游透性处理和平衡标记操作。
注意:在实验过程中,切勿让样品干燥。处理好的样本放在湿盒中保持样本的湿润。
B. 增加样本的通透性
1、用PBS溶液配置终浓度为20μg/ml的蛋白酶K(不含DNase活性),每个样本需要100μL 蛋白酶K 溶液。
2、每个样本上滴加100μL 浓度为20μg/ml 的蛋白酶K溶液,使其被全部覆盖,室温孵育20 分钟。
注意:严格控制孵育时间,孵育时间过长可对细胞造成一定的伤害,过短则可能造成透性处理不充
分,影响标记效率。蛋白酶K工作液的使用浓度、处理时间及温度因组织或细胞的类型或固定方法
的不同而有所不同,使用者可参照试剂盒提供的标准使用说明摸索最合适的实验条件。
3、用PBS 溶液润洗样本三次。
4、轻轻去掉多余液体,并用滤纸小心吸干载玻片上样本周围的液体。处理好的样本放在湿盒中保持样本的湿润。
C.配制标记反应液:
组分比例 |
1个样品 |
10个样品 |
20个样品 |
FITC-标记反应混合物 |
48 uL |
480 uL |
960 uL |
TdT 酶(25x) |
2 uL |
20 uL |
40 uL |
标记反应液 |
50 uL |
500 uL |
1000 uL |
注意:为了减少试剂损耗,在打开管盖前需短暂离心试管。标记反应液应充分混匀,并且一次用完,不能储存,所以应该酌量配置。
D. 标记反应
1、洗涤样品一次,轻轻吸干样本周围的缓冲液,注意不要触碰到样本。
2、在每个样本上立即滴加50μl 上述准备的TdT 标记反应混合物。
3、用预先裁剪好的比样本稍大的Parafilm®封口膜覆盖样本。
注意:可将封口膜折起一角以便于取放。封口膜的使用不仅可以确保反应混合物的均匀分布,也能减少孵育过程中的液体蒸发。
4、避光,将切片置于湿盒中于37℃孵育60-90 分钟。
E. 终止与结果评断
1、移走Parafilm®封口膜,并将切片置于PBS 溶液中室温孵育1 分钟。
2、轻轻去掉多余液体,换用新鲜的PBS 溶液室温孵育1 分钟。
3、用滤纸轻轻擦掉样本周围及背面的PBS溶液。
注意:为了降低背景,载玻片在用PBS洗一遍之后,可再用含0.1% Triton® X-100和 2mg/ml BSA的PBS洗三次,每次5分钟,这样游离的未反应的标记物可以清除较干净。
4、滴加50uL PI染色液,在黑暗中室温放置5分钟
5、洗涤样本,将载玻片浸入去离子水中,室温放置5分钟。重复两次,总共洗三次。
6、滴干载玻片上多余的水并且用吸水纸擦拭细胞周边的区域。
7、立即在荧光显微镜下分析样本,用标准的荧光过滤装置在520 ± 20nm的荧光下观察绿色荧光,在>600nm下观察PI的红色荧光。如有必要,载玻片能在4℃黑暗条件下存放过夜。
注意:PI能将凋亡和未凋亡的细胞都染成红色,只在凋亡的细胞核中才有FITC-dUTP掺入而定位的绿色荧光。
8、统计凋亡细胞数和细胞总数并计算出细胞凋亡率。
荧光显微镜检测
·
PI 滤光片可以用来观察检测样本中的全体细胞,所有细胞都呈现红色荧光,FITC滤光片观察样本,发出明亮绿色荧光信号的细胞为凋亡细胞,而暗淡或没有绿色荧光发出的区域则为未凋亡细胞或非凋亡晚期细胞。非凋亡细胞由于缺乏大量的3’-OH 末端,因此不会被显著掺入和标记荧光素基团。
·
由于凋亡细胞中含有
二 组织冰冻切片处理流程
该操作流程与石蜡包埋组织切片相似,除了将脱蜡步骤替换为固定和短暂的水化步骤,并将蛋白酶K 的处理时间缩短到10 分钟。在进行该实验检测前需固定冰冻组织。为了避免在清洗步骤中的样本在玻片上损失,建议不用洗瓶清洗,而是将玻片浸在PBS溶液中2-3 次进行清洗。
注意:在操作中避免样本干燥!!!
A. 组织固定与水化
1、将玻片浸没在4%多聚甲醛溶液(溶于PBS)中,室温孵育15 分钟。
2、轻轻去掉多余液体,并用滤纸小心吸干载玻片上样本周围的液体。
3、将玻片浸没在PBS 溶液中,室温孵育15 分钟。
4、轻轻去掉多余液体,并用滤纸小心吸干载玻片上样本周围的液体。这时可用疏水笔在样品周围描绘样品分布的轮廓,便于下游透性处理和平衡标记操作。
B. 增加样本通透性并将蛋白酶K 的处理时间缩短到10 分钟,其他同于(一、B)
C. D.E. 同于一
三、 固定细胞片处理流程
该操作流程与冰冻组织切片相似,除了将蛋白酶K 的处理时间缩短到5 分钟。将悬浮细胞固定到玻片上的操作请参考“注意事项”章节。为了避免在清洗步骤中的样本在玻片上损失,建议不用洗瓶清洗,而是将玻片浸在PBS溶液中2-3 次进行清洗。注意:在操作中避免样本干燥!!!
四、流式细胞术检测细胞悬液处理流程
A. 细胞固定
1、4°C 缓慢离心(2000rpm)5 分钟,去除培养上清,PBS 洗涤一次,重新离心收集细胞。
2、用新鲜配置4%多聚甲醛(in PBS)固定细胞,使其终密度为1×106/ml,室温孵育10 分钟。为防止细胞聚集成团,宜在侧摆摇床或水平摇床上缓慢摇动的同时进行固定,离心收集细胞。按照上述方法PBS重悬洗涤一次,去除固定液并用80%乙醇溶液以相同细胞密度重悬。
注意:固定后的细胞可以保存在4°C,可以稳定保存2-6 个月。
B. 水化
1、将1ml 固定细胞(1×106
cells/ml)转移到干净的离心管中。
2、室温缓慢离心(1000rpm)5 分钟,去除乙醇溶液上清。
3、将细胞重悬在200μl PBS 溶液中。
4、室温缓慢离心(1000rpm)5 分钟,去除PBS 溶液,重复一次。
C.增加细胞通透性
用含0.1% Triton X-100和0.2%BSA的PBS重悬细胞,室温孵育5-10分钟。
D1.设立阳性对照(可选)
1、DNaseⅠ溶液配置:3000U/ml或者1mg/ml in PBS, 1mM MgSO4 and 1mg/ml
BSA
2、取经过预处理(已完成固定和通透性处理)的细胞,用DNaseⅠ处理,室温孵育10 分钟。
D2. 设立阴性对照(可选)
在配置E中的标记反应液时,不加TdT酶。
E. 配制标记反应液:
组分比例 |
阴性对照 |
1个样品 |
10个样品 |
20个样品 |
FITC-标记反应混合物 |
48uL |
48 uL |
480 uL |
960 uL |
TdT 酶(25x) |
0 |
2 uL |
20 uL |
40 uL |
标记反应液 |
加水至50uL |
50 uL |
500 uL |
1000 uL |
注意:为了减少试剂损耗,在打开管盖前需短暂离心试管。标记反应液应充分混匀,并且一次用完,不能储存,所以应该酌量配置。
F. 标记反应
1、PBS洗涤样品一次。
2、在每个样本加入50μl 上述准备的TdT 标记反应混合物,重悬样品。
3、避光,将样品放置于37℃孵育60 分钟。
G. 终止与结果评断
1、反应完成后,用200uLPBS洗涤1次。
2、滴加50uL PI染色液,在黑暗中室温放置5分钟。
3、离心,用200uLPBS洗涤样本,总共洗三次。
4、立即用流式细胞仪分析样本。
注意:PI能将凋亡和未凋亡的细胞都染成红色,只在凋亡的细胞核中才有FITC-dUTP掺入而定位的绿色荧光。
5、统计凋亡细胞数和细胞总数并计算出细胞凋亡率。
流式细胞仪检测:
·
用装备有488nm
氩离子激发光源的流式细胞仪检测标记后的细胞悬液,发射波长是517nm(FITC)和580(PI)。可以设定FITC-PI双染的细胞和PI单染的细胞比值作为凋亡细胞的比率。
·
流式细胞仪检测中光散射参数的改变同样可以用来监测和判断细胞凋亡情况的发生。例如,未处理的悬浮细胞大多有很高的前向散射值,但诱导出现凋亡后,由于细胞皱缩和膜起泡,侧向散射将大大增强。结合光散射参数的改变及TUNEL 标记实验的检测结果,往往可以确定或互相印证用单个方法得到的结论。
常见问题
1. 非特异性荧光
a. 有些细胞或组织,
核酸或者聚合酶活性水平较高,导致出现非特异性的荧光标记。
建议:取细胞或组织后立即固定,以阻止这些酶导致假阳性。
b. TUNEL反应时间过长,或细胞或组织表面不能保持湿润,也可能出现非特异性荧光。
建议:注意控制反应时间,并确保样品湿润。
2. 荧光背景很高
a. 支原体污染。
建议:请使用支原体染色检测试剂盒检测是否为支原体污染。
b. 高速分裂和增殖的细胞,有时也会出现细胞核中的
建议:凋亡晚期检测,同时减少TUNEL反应时间,以提高信噪比。
c. TUNEL反应过强。
建议:减少TdT的用量至标准量的20-50%。
3. 标记效率低
a. 样品固定时间过长,导致交联程度过高。
建议:适当减少固定时间。
b. 荧光淬灭。Fluorescence在普通光照10分钟就会严重淬灭。
建议:避光操作。
产品规格
货号 |
规格 |
TdT 酶 |
FITC-标记反应混合物 |
PI |
AT005-1 |
10
T |
20
uL |
500
uL |
500
uL |
AT005-2 |
20
T |
40
uL |
1
mL |
1
mL |
AT005-3 |
50
T |
100
uL |
1.25
mLx2 |
1.25
mLx2 |
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